(12)发明专利申请
(10)申请公布号 CN 112342252 A(43)申请公布日 2021.02.09
(21)申请号 202011237395.9(22)申请日 2020.11.09
(71)申请人 唐山晋广化工有限公司
地址 063000 河北省唐山市南堡开发区荣
业道南侧、化工路东侧(72)发明人 夏爱艳
(74)专利代理机构 石家庄领皓专利代理有限公
司 13130
代理人 姬学森(51)Int.Cl.
C12P 13/02(2006.01)C12N 1/21(2006.01)C12N 15/70(2006.01)C12N 15/66(2006.01)C12N 9/88(2006.01)
权利要求书1页 说明书8页
C12R 1/19(2006.01)
CN 112342252 A()发明名称
一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法(57)摘要
本发明涉及2‑氨基2,3二甲基丁酰胺制备技术领域,尤其涉及一种2‑氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;S2、新菌株的获取:以pET‑28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.2mM金属离子和0.8mL有机溶剂,以获得新菌株;S3、发酵条件优化:令新菌株在30‑40℃下生长至OD600为0.8‑1.0时,向其中添加诱导剂。本发明在制备过程中,加入金属离子和有机溶剂,能够对腈水合酶的活力存在一定的影响,既能进一步提高其在中性偏酸的条件下的稳定性,又能改善碱性环境下对酶的抑制作用。
CN 112342252 A
权 利 要 求 书
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1.一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,包括以下步骤:S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;
S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.2mM金属离子和0.8mL有机溶剂,以获得新菌株;
S3、发酵条件优化:令新菌株在30-40℃下生长至OD600为0.8-1.0时,向其中添加诱导剂,令其在发酵培养基内进行发酵24-48h以获得腈水合酶,在培养过程中,间隔补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;
S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于pH6.0-10.0、20-40℃环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。
2.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述菌株的筛选过程采用的是铁离子显色反应,其中,铁离子显色反应的标准为颜色呈深紫色且带有金属光泽。
3.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述金属离子为Ni2+、K+和Ca2+中的任意一种,有机溶剂为异辛烷、醋酸甲酯和乙二醇单甲醚的其中一种。
4.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述载体与大肠杆菌重组菌的结合过程如下:先利用EcoRI和HindIII酶切割位点,然后进行蛋白诱导表达,将切割下的质粒与基因用DNA连接酶连接成重组质粒,最后与大肠杆菌重组菌的感受态细胞混合。
5.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述诱导剂为0.1mM IPTG,诱导温度为20℃。
6.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述发酵培养基组分为1.6%(w/v)山梨醇、2%(w/v)鲜骨蛋白胨、1%(w/v)Oxoid酵母提取物和0.25%(w/v)Na2HPO4。
7.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述新菌株为大肠杆菌重组菌中的E.coli BL21(DE3)/pET-28a(+)NHase。
8.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述S3中补加鲜骨蛋白胨的起始时间为第4个小时,且补加的时间间隔为4h。
9.根据权利要求1所述的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,其特征在于,所述2-氨基-2,3-二甲基丁腈的初始浓度为0.03-0.3M,且在S4中,2-氨基-2,3-二甲基丁腈和腈水合酶的配比为(1.1-1.3):1。
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CN 112342252 A
说 明 书
一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法
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技术领域
[0001]本发明涉及2-氨基2,3二甲基丁酰胺制备技术领域,尤其涉及一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法。
背景技术
[0002]2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺,外观为白色片状晶体,熔点为84℃,能溶于水和大多数有机溶剂。是咪唑啉酮类超高效除草剂如咪唑乙烟酸、咪唑喹啉酸和甲氧咪草烟等的通用中间体,市场需求广阔。但是至制备2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺的过程中,其中所含的腈水合酶在中性偏酸的条件下,稳定性较好,而其碱性环境会对该酶的酶活造成严重的抑制,影响2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺的被吸收反应效果。因此,我们提出了一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法用于解决上述问题。
发明内容
[0003]本发明的目的是为了解决现有技术中存在的缺点,而提出的一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法。[0004]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0005]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0006]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.2mM金属离子和0.8mL有机溶剂,以获得新菌株;[0007]S3、发酵条件优化:令新菌株在30-40℃下生长至OD600为0.8-1.0时,向其中添加诱导剂,令其在发酵培养基内进行发酵24-48h以获得腈水合酶,在培养过程中,间隔补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0008]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于pH6.0-10.0、20-40℃环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0009]优选的,所述菌株的筛选过程采用的是铁离子显色反应,其中,铁离子显色反应的标准为颜色呈深紫色且带有金属光泽。[0010]优选的,所述金属离子为Ni2+、K+和Ca2+中的任意一种,有机溶剂为异辛烷、醋酸甲酯和乙二醇单甲醚的其中一种。[0011]优选的,所述载体与大肠杆菌重组菌的结合过程如下:先利用EcoRI和HindIII酶切割位点,然后进行蛋白诱导表达,将切割下的质粒与基因用DNA连接酶连接成重组质粒,最后与大肠杆菌重组菌的感受态细胞混合。[0012]优选的,所述诱导剂为0.1mM IPTG,诱导温度为20℃。[0013]优选的,所述发酵培养基组分为1.6%(w/v)山梨醇、2%(w/v)鲜骨蛋白胨、1%(w/v)Oxoid酵母提取物和0.25%(w/v)Na2HPO4。
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优选的,所述新菌株为大肠杆菌重组菌中的E.coli BL21(DE3)/pET-28a(+)优选的,所述S3中补加鲜骨蛋白胨的起始时间为第4个小时,且补加的时间间隔为
NHase。
[0015]
4h。
[0016]
优选的,所述2-氨基-2,3-二甲基丁腈的初始浓度为0.03-0.3M,且在S4中,2-氨
基-2,3-二甲基丁腈和腈水合酶的配比为(1.1-1.3):1。[0017]本发明的有益效果是:[0018]1、本发明在制备过程中,向其中添加金属离子,其可以维持多相体系的渗透平衡,且在添加的过程中,发现在加入了Ni2+后,经发酵后,腈水合酶的活性提幅都高于其他金属离子。
[0019]2、本发明在制备过程中,向其中添加有机溶剂,其可以改善腈水合酶的稳定性,且在添加的过程中,发现在加入量异辛烷后,经发酵后,其对腈水合酶活性的促进作用都优于其他有机溶剂的效果。[0020]综上所述,本发明在制备过程中,加入金属离子和有机溶剂,能够对腈水合酶的活力存在一定的影响,既能进一步提高其在中性偏酸的条件下的稳定性,又能改善碱性环境下对酶的抑制作用。
具体实施方式
[0021]下面结合具体实施例对本发明作进一步解说。[0022]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0023]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0024]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.2mM金属离子和0.8mL有机溶剂,以获得新菌株,其中金属离子为Ni2+、K+和Ca2+中的任意一种,有机溶剂为异辛烷、醋酸甲酯和乙二醇单甲醚的其中一种,在将载体与大肠杆菌重组菌结合时,先利用EcoRI和HindIII酶切割位点,然后进行蛋白诱导表达,将切割下的质粒与基因用DNA连接酶连接成重组质粒,最后与大肠杆菌重组菌的感受态细胞混合;[0025]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0026]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于pH6.0、35℃环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0027]其中,发酵培养基组分为1.6%(w/v)山梨醇、2%(w/v)鲜骨蛋白胨、1%(w/v)Oxoid酵母提取物和0.25%(w/v)Na2HPO4;2-氨基-2,3-二甲基丁腈的初始浓度为0.3M。[0028]实施例一:[0029]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0030]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;
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S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化
时加入0.2mM金属离子和0.8mL有机溶剂,以获得新菌株;[0032]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0033]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于pH6.0、35℃环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0034]实施例二:[0035]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0036]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0037]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.2mM金属离子和0.8mL有机溶剂,以获得新菌株;[0038]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0039]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于pH8.0、35℃环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0040]对比例一-对比例三:[0041]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0042]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0043]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.2mM金属离子,以获得新菌株;[0044]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0045]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于35℃且为酸性的环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0046]对比例四-对比例六:[0047]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0048]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0049]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.2mM金属离子,以获得新菌株;[0050]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂
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0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0051]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于35℃且为碱性的环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0052]于对比例一-对比例六中,分别加入三种金属离子(Ni2+、K+和Ca2+),检测发酵后腈水合酶的酶活,另外,再取湿菌体(小球诺卡氏菌)3.0g悬浮于180ml pH 7.8的磷酸盐缓冲液中,在30℃、转速180rpm的条件下预热5min,加入2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺,使其终浓度达到0.2M,反应40min,取样气相测定上述反应40min后的反应溶液每100mL中2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺的浓度(即2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺此时的占比率,占比率高则说明2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺仍有大量未被吸收反应,吸收反应率低,反之则说明2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺吸收反应率高),具体数据如下表所示(表中“√”表示加入,“×”表示未加入):
[0053]
注:占比率为100mL的反应后溶液中2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺所占的百分比。[0055]由上表数据可知,向菌株中添加金属离子(Ni2+、K+或Ca2+),都可以维持多相体系的渗透平衡,且在添加的过程中,可以发现在加入了Ni2+后,发酵后腈水合酶的活性的增幅都高于其他金属离子,另外,在同样的条件下,加入了Ni2+改性后的2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺在反应容液中的占比率相对较低,也就是说,该情况下的2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺更易被吸收反应。
[0056]对比例七-对比例九:[0057]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0058]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0059]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.8mL有机溶剂,以获得新菌株;
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[00]
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S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂
0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0061]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于35℃且为酸性的环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0062]对比例十-对比例十二:[0063]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[00]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0065]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,纯化时加入0.8mL有机溶剂,以获得新菌株;[0066]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0067]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于35℃且为碱性的环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0068]对比例七-对比例十二中,分别加入三种有机溶剂(异辛烷、醋酸甲酯或乙二醇单甲醚),检测发酵后腈水合酶的酶活,另外,再取湿菌体(小球诺卡氏菌)3.0g悬浮于180ml pH 7.8的磷酸盐缓冲液中,在30℃、转速180rpm的条件下预热5min,加入2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺,使其终浓度达到0.2M,反应40min,取样气相测定上述反应40min后的反应溶液每100mL中2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺的浓度(即2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺此时的占比率,占比率高则说明2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺仍有大量未被吸收反应,吸收反应率低,反之则说明2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺吸收反应率高),具体数据如下表所示(表中“√”表示加入,“×”表示未加入):
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[0069]
[0070]
注:占比率为100mL的反应后溶液中2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺所占的百分比。
[0072]由上表数据可知,向菌株中添加有机溶剂(异辛烷、醋酸甲酯或乙二醇单甲醚),可以改善腈水合酶的稳定性,且在添加的过程中,发现在加入异辛烷后,经发酵后,其对腈水合酶活性的促进作用都优于其他有机溶剂的效果,另外,在同样的条件下,加入了异辛烷改性后的2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺在反应溶液中的占比率相对较低,也就是说,该情况下的2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺更易被吸收反应。[0073]参照例一:[0074]一种2-氨基2,3二甲基丁酰胺的制备方法,包括以下步骤:[0075]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0076]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,以获得新菌株;[0077]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0078]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于pH6.0、35℃环境下进行
[0071]
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催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。[0079]参照例二:[0080]S1、菌株的筛选:对大肠杆菌重组腈水合酶酶库进行筛选,通过铁离子显色反应,获得来源于Pseudonocardia thermophila JCM3095的大肠杆菌重组菌;[0081]S2、新菌株的获取:以pET-28a为载体,通过镍柱对大肠杆菌重组菌进行纯化,以获得新菌株;[0082]S3、发酵条件优化:令新菌株在37℃下生长至OD600为0.8时,向其中添加诱导剂0.1mM IPTG,在20℃环境下进行诱导,令其在发酵培养基内进行发酵24h以获得腈水合酶,在培养过程中,从第4个小时开始,每隔4h向其中补加1%(w/v)鲜骨蛋白胨;[0083]S4、反应体系的构建:以2-氨基-2,3-二甲基丁腈为底物,腈水合酶作为催化剂,并令其二者以1.3:1的配比在HFE-7100/水(10%,v/v)两相体系下,于pH8.0、35℃环境下进行催化水合反应,制得2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺。
[0084]将对比例一和七与实施例一以及参照例一对比成组,并将对比例四和十与实施例二及参照例二对比成组,对其中的腈水合酶进行酶活检测,另外,再取湿菌体(小球诺卡氏菌)3.0g悬浮于180ml pH 7.8的磷酸盐缓冲液中,在30℃、转速180rpm的条件下预热5min,加入2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺,使其终浓度达到0.2M,反应40min,取样气相测定上述反应40min后的反应溶液每100mL中2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺的浓度(即2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺此时的占比率,占比率高则说明2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺仍有大量未被吸收反应,吸收反应率低,反之则说明2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺吸收反应率高),具体数据如下表所示(表中“√”表示加入,“×”表示未加入):
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[0085]
注:占比率为100mL的反应后溶液中2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺所占的百分比。
[0087]由上表可知,在菌株中加入金属离子或有机溶剂后,对经发酵后所产生的腈水合酶的活性都具有一定的促进作用,且同时加入金属离子和有机溶剂后,能够进一步的提高腈水合酶的活性,另外,在同样的条件下,仅加入金属离子或有机溶剂改性后的2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺在反应溶液中的占比率达20%-30%,而同时加入金属离子和有机溶剂改性后的2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺在反应溶液中的占比率低于20%,能够大幅度提高2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺的占比率,也就是说,该情况下的2-氨基-2,3-二甲基丁酰胺更易被吸收反应。
[0088]以上所述,仅为本发明较佳的具体实施方式,但本发明的保护范围并不局限于此,任何熟悉本技术领域的技术人员在本发明揭露的技术范围内,根据本发明的技术方案及其发明构思加以等同替换或改变,都应涵盖在本发明的保护范围之内。
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